硫氧還蛋白過氧化物酶測定試劑盒

（Thioredoxin peroxidase，分光光度法 100T/48 樣）

一、測定意義

TPX屬于過氧化物酶家族，在體內主要通過還原過氧化氫和一些氫過氧化物來實現抗氧化作用，功能與GPX類似，也是谷-胱甘肽氧化還原循環關鍵酶之一。TPX普遍存在于各種生物體內，如酵母、植物、動物、原生動物、寄生蟲、細菌和古細菌，在進化上高度保守。TPX與細胞增殖、分化、細胞凋亡及腫瘤發生調控密切相關。TPX的主要功能包括細胞脫毒、抗氧化和調節由過氧化氫介導的信號轉導和免疫反應。

二、測定原理

TPX催化H2O2氧化二硫蘇糖醇（DTT），H2O2的吸收波長為240nm，通過測定240nm吸光度的下降速率，通過對照減去過氧化氫酶（CAT）催化分解的H2O2，即可計算出TPX活性。

因此，本試劑盒可以同時測定樣品TPX和CAT活性。

三、自備儀器用品

低溫離心機、紫外分光光度計、水浴鍋、1mL石英比色皿、可調節移液槍、蒸餾水

四、試劑組成和配制

試劑一 液體×1 瓶，室溫保存；

試劑二 液體×1 瓶，-20°C保存；

試劑三 液體×1 支，4°C保存。

五、粗酶液提取

1.組織：按照組織質量（g）：試劑一體積(mL)1：5~10 的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL試劑一）進行冰浴勻漿。10000g，4℃離心10min，取上清置冰上待測。

2.細菌、真菌： 按照細胞數量（10 4個）：試劑一體積(mL)500~1000：1的比例（建議500萬細胞加入1mL試劑一），冰浴超聲波破碎（功率300W，超聲3s，間隔7秒，總時間3min）；在4°C下1000g離心10min，取上清，置冰上待測。

六、TPX測定步驟

1. 分光光度計預熱30min 以上，調節波長到240nm，用蒸餾水調零；

2. 試劑一和試劑二置于37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）預熱30min 以上；

3. CAT活性測定管：取1mL石英比色皿，加入20μL上清液，900μL試劑一，80μL試劑三，迅速混勻后與240nm測定10s和130s吸光度，分別為A1和A2，計算ΔACAT=A1-A2

4. 總活性測定管：取1mL石英比色皿，加入20μL上清液，900μL試劑二，80μL試劑三，迅速混勻后與240nm測定10s和130s吸光度，分別為A3和A4。ΔA總=A3-A4

注：對大量樣品，每個樣品都需要單獨測定其CAT活性。

七、TPX活性計算

(1) 按樣本蛋白濃度計算

活性單位定義：在37℃或25℃，每毫克蛋白每分鐘催化1μmol H2O2為1U。

CAT活性(U/mg prot) = △ACAT÷(ε×d)×V反總÷(Cpr×V樣)÷T =0.573×△ACAT÷ Cpr

總活性（U/mg prot）=△A總÷(ε×d)×V反總÷(Cpr×V樣)÷T =0.573×△A總÷ Cpr

TPX活性（U/mg prot）=總活性-CAT活性

(2) 按樣本質量計算

單位的定義：在37℃或25℃，每g組織每分鐘催化1μmol H2O2為1U。

CAT活性（U/g） △ACAT÷(ε×d)×V反總÷(W×V樣÷V樣總)÷T =0.573×△ACAT÷W

總活性（U/g）=△A總÷(ε×d)×V反總÷(W×V樣÷V樣總)÷T =0.573×△A總÷W

TPX活性（U/g）=總活性-CAT活性

(3) 按細胞數量計算

單位的定義：在37℃或25℃，每10 4個細胞每分鐘催化1μmol H2O2為1U。

CAT活性（U/10 4 cells） = △ACAT÷(ε×d)×V反總÷(細胞數量×V樣÷V樣總)÷T =0.573×△ACAT÷細胞數量

總活性（U/10 4 cells）=△A總÷(ε×d)×V反總÷(細胞數量×V樣÷V樣總)÷T =0.573×△A總÷細胞數量

TPX活性（U/10 4 cells）=總活性-CAT活性

ε：H2O2在240nm 處摩爾吸光系數為4.36×10 4L/mol/cm=0.0436 L/μmol/cm；

d：比色皿光徑（cm），1cm；

V反總：反應體系總體（L），1000μL=1×10 -3L；

Cpr：上清液蛋白質濃度（mg/mL），需要另外測定，建議使用本公司BCA 蛋白質含量測定試劑盒；

V樣：加入反應體系中上清液體積（mL），20μL=0.02mL；

V樣總：加入提取液體積，1mL；

T：催化反應時間（min），2min；

W：樣本質量，（g）；

細胞數量，（10 4）。

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