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關于Western Blot實驗操作時候的一些注意事項
更新時間：2018-07-13 點擊次數：1421次關于Western Blot實驗操作時候的一些注意事項！
上海信帆生物代做Western Blot實驗，提供實驗檢測服務，歡迎大家！
常見問題如下：
1、煮好后的樣品，若沒有及時上樣分離，應如何保存，可以保存多久?
2、有沒有人在用bio-rad的小型垂直電泳槽，有沒有操作手冊?
3、濕式轉移時是否必須要用bio-rad的濾紙?
4、恒壓轉移的條件如何確定，因為我要分離小至21KD，中至66KD，大致170KD的蛋白質，轉移條件能夠相同嗎?
5、凝膠的濃度是不是可以用一個濃度?書上寫不同的凝膠濃度分離的分子量范圍不同，還給出了一個線形范圍，是不是不在這個范圍內也能分離，只是就不是線性范圍了?
6、電泳用的是恒流，一塊膠，20mA，100分鐘左右。轉膜也是恒流，38mA，100分鐘。而且我用別人的細胞和一抗在我的整個反應體系下做出來了，當然彼此的目的蛋白不同。所以，我想問題應該出在抗原和一抗上，不知對不對。
關于Western Blot實驗操作時候的一些注意事項！
解答：
1、煮好后的樣品，放到-20，我們在一個月后此樣品，效果一樣。
2、bio-rad的小型垂直電泳槽的操作手冊在他們的主頁Bio-Rad USA上有。
3、轉移時一般的WATERMEN濾紙就可以。
4、轉移條件是和蛋白質大小有關的：以次確定電壓和時間。具體可讓ptglab幫你定奪。
5、凝膠的濃度也是和分離蛋白質大小有關。不是隨心所欲選的，否則分離效果可能不是你所期望的。
6、電泳的條件：樣品的分子量決定了膠的濃度，一般使樣品跑至膠的中部即可。正常條件下，電泳時溴酚藍和10kd左右蛋白跑在一起。由此可以決定電泳的電壓和時間。建議你用恒壓80-100伏。
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