各種蛋白質提取方法大全
更新時間:2017-02-20 點擊次數:1315次一、植物組織蛋白質提取方法
1、根據樣品重量(1g樣品加入3.5ml提取液,可根據材料不同適當加入),準備提取液放在冰上。
2、把樣品放在研缽中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上靜置(3-4小時)。
3、用離心機離心8000rpm40min4℃或11100rpm20min4℃
4、提取上清夜,樣品制備完成。蛋白質提取液:300ml
4.11Mtris-HCl(pH8)45ml
4.2甘油(Glycerol)75ml
4.3聚乙烯吡咯烷酮(Polyvinylpolypyrrordone)6g 這種方法針對SDS-PAGE,垂直板電泳!
二、三氯醋酸—丙酮沉淀法提取植物組織蛋白質
1、在液氮中研磨葉片
2、加入樣品體積3倍的提取液在-20℃的條件下過夜,然后離心(4℃8000rpm以上1小時)棄上清。
3、加入等體積的冰浴丙酮(含0.07%的β-巰基乙醇),搖勻后離心(4℃8000rpm以上1小時),然后真空干燥沉淀,備用。
4、上樣前加入裂解液,室溫放置30分鐘,使蛋白充分溶于裂解液中,然后離心(15℃8000rpm以上1小時或更長時間以沒有沉淀為標準),可臨時保存在4℃待用。
5、用Brandford法定量蛋白,然后可分裝放入-80℃備用。藥品:提取液:含10%TCA和0.07%的β-巰基乙醇的丙酮裂解液:2.7g尿素0.2gCHAPS溶于3ml滅菌的去離子水中(終體積為5ml),使用前再加入1M的DTT65μl/ml。這種方法針對雙向電泳,雜質少,離子濃度小的特點!當然單向電泳也同樣適用,只是電泳的條帶會減少!
三、組織:腸黏膜
目的:WESTERN BLOT檢測凋亡相關蛋白的表達應用TRIPURE提取蛋白質步驟:含蛋白質上清液中加入異丙醇:(1.5ml每1mlTRIPURE用量)倒轉混勻,置室溫10min 離心:12000 g,10min,4度,棄上清加入0.3M鹽酸胍/95%乙醇:(2ml每1mlTRIPURE用量)振蕩,置室溫20min 離心: 7500g,5 min,4度,棄上清重復0.3M鹽酸胍/95%乙醇步2次沉淀中加入100%乙醇 2ml 充分振蕩混勻,置室溫20 min 離心: 7500g,5min,4度,棄上清吹干沉淀 1%SDS溶解沉淀離心:10000g,10min,4度取上清-20度保存(或可直接用于WESTERN BLOT)存在的問題:加入1%SDS后沉淀不溶解,還是很大的一塊,4度離心后又多了白色沉定,SDS結晶?測濃度,含量才1mg/ml左右。解決:提蛋白試劑盒,另外組織大小適中,要碎,立即加2X BUFFER,然后煮5-10分鐘,效果很好的。
四、植物材料:水稻苗,葉鞘,根
1、200毫克樣品置于冰上磨碎
2、加lysis buffer,離心,10000rpm,4度,5min取上清
3、重復離心5min
4、lysis buffer:urea np-40 ampholine 2-me pvp-40
五、蛋白質樣品制備
秧苗蛋白質樣品的提取按Davermal等(1986)的方法進行。100mg材料剪碎后加入10mgPVP-40(聚乙烯吡咯烷酮)及少量石英砂,用液氮研磨成粉,加入1.5 ml 10% 三氯乙酸(丙酮配制,含10mM即0.07%β-巰基乙醇),混勻,-20℃沉淀1小時,4℃,15000 r/min離心15 min,棄上清,沉淀復溶于1.5ml冷丙酮(含10 mMβ-巰基乙醇),再于-20℃沉淀1小時,同上離心棄上清,(有必要再用80%丙酮(含10 mMβ-巰基乙醇所得沉淀低溫冷凍真空抽干。按每mg干粉加入20μl(可調)UKS液[9.5 M尿素,5mM碳酸鉀,1.25%SDS,0.5%DTT(二硫蘇糖醇),2% Ampholine (Amersham Pharmacia Biotech Inc,pH3.5-10),6% Triton X-100],37℃溫育30min,期間攪動幾次,28度 (溫度低,高濃度的尿素會讓溶液結冰)16000 r/min離心15 min,離心力越大時間長一點越好!上清即可上樣電泳。或者-70度保存。
六、植物根中蛋白質的抽取
1、sample,液氮研磨
2、裝1.5 ml centrifuge 用tube
3、加 1M KH2PO4+K2HPO4 700μl
4、12000 rpm,4度,10-15min
5、取上層液,蛋白質就在里面